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Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC, Summenformel C40H56N12O9, CAS 167698-69-3. Als Peptid sollte es als Peptid die allgemeinen Eigenschaften von Peptidsubstanzen besitzen. Peptide sind Verbindungen, die durch die Verbindung von Aminosäuren über Peptidbindungen entstehen und eine gute Wasserlöslichkeit aufweisen, da polare Gruppen an der Peptidkette (wie Amino- und Carboxylgruppen) Wasserstoffbrückenbindungen mit Wassermolekülen bilden können.
Darüber hinaus weisen Peptidsubstanzen meist eine hohe biologische Aktivität auf und können an verschiedenen biologischen Prozessen beteiligt sein. Es hat ein breites Anwendungsspektrum in der Biochemie und der medizinischen Forschung, einschließlich der Verwendung als Peptidsubstrat für SARS-CoV PLpro, Fluoreszenzsonden, Hochdurchsatz-Inhibitor-Screening-Tools, Reagenzien für die Proteininteraktionsforschung und immunologische Reagenzien. Diese Anwendungen tragen nicht nur dazu bei, das Wesen und die Mechanismen biologischer Prozesse aufzudecken, sondern liefern auch neue Ideen und Methoden für die Arzneimittelentwicklung und Krankheitsbehandlung.
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Maßgeschneiderte Flaschenverschlüsse und Korken:
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Chemische Formel |
C32H51N11O9 |
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Genaue Masse |
733 |
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Molekulargewicht |
734 |
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m/z |
733 (100.0%), 734 (34.6%), 735 (3.1%), 735 (2.7%), 734 (2.2%), 735 (1.8%), 734 (1.8%), 735 (1.4%) |
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Elementaranalyse |
C, 52.38; H, 7.01; N, 21.00; O, 19.62 |

Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMCAls spezifische Peptidsubstanz findet es ein breites Anwendungsspektrum in der Biochemie und der medizinischen Forschung.
Erstens
Es wird häufig als Peptidsubstrat für SARS-CoV PLpro (Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus Papaya like Protease) verwendet. SARS-CoV ist ein Coronavirus und sein PLpro ist ein Schlüsselenzym im Virusreplikationsprozess und beteiligt sich an der Verarbeitung viraler Polymerproteine. Daher hat es einen wichtigen Anwendungswert bei der Untersuchung des Replikationsmechanismus von SARS-CoV, dem Screening antiviraler Medikamente und der Impfstoffentwicklung.
Zweitens
Es kann auch als Fluoreszenzsonde für die biologische Bildgebung und Zelllokalisierungsforschung dienen. Aufgrund der Anwesenheit der AMC-Gruppe (Aminomethylcumarin) weist dieses Peptid Fluoreszenzeigenschaften auf und kann bei Anregung Fluoreszenz emittieren. Dies ermöglicht die Markierung spezifischer Moleküle oder Strukturen in Zellen und Geweben und zeigt so die dynamischen Veränderungen biologischer Prozesse auf.

Zusätzlich
Es kann auch für das Hochdurchsatz--Inhibitor-Screening und die kontinuierliche Analyse verwendet werden. Im Prozess der Arzneimittelentwicklung ist es von entscheidender Bedeutung, Verbindungen zu finden, die die Aktivität bestimmter Enzyme oder Proteine wirksam hemmen können. Als Peptidsubstrat für PLpro kann es in Verbindung mit potenziellen Inhibitoren verwendet werden, um deren Aktivität durch Messung von Änderungen in der Substrathydrolyserate zu bewerten. Diese Methode bietet die Vorteile eines hohen Durchsatzes, einer hohen Empfindlichkeit und einer hohen Spezifität, was den Prozess des Arzneimittelscreenings erheblich beschleunigen kann.
Endlich
Darüber hinaus lässt es sich auch auf die immunologische Forschung anwenden. Peptidstoffe spielen eine wichtige Rolle im Immunsystem und können als Antigene oder Antikörper an der Immunantwort beteiligt sein. Die spezifische Sequenz und Struktur von Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC kann ihm Immunogenität oder Immunreaktivität verleihen, wodurch es für die Herstellung von Antikörpern, Impfstoffen oder immundiagnostischen Reagenzien geeignet ist.


Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMCist ein bioaktives Peptid, das häufig in der biomedizinischen Forschung und Arzneimittelentwicklung verwendet wird. Im Folgenden sind die detaillierten Schritte und entsprechenden chemischen Gleichungen der Labormethode zur Synthese von Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC aufgeführt:
Schritt 1
Wählen Sie den passenden Anbieter:
Verwenden Sie einen geeigneten Träger (z. B. Rink Amide MBHA-Harz), um die endgültige AMC-Gruppe auf dem Träger zu befestigen.
Schritt 2
Sequentielle Synthese von Polypeptidketten:
Unter Verwendung der Fmoc-Fest{0}}-Phasensynthesestrategie wurden Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-Reste nacheinander an das feste Ende der AMC-Gruppe auf dem Träger angefügt. Die Zugabe jedes Restes umfasst die folgenden Schritte:
-Entschützung: Entfernen Sie die Fmoc-Schutzgruppe und legen Sie die freie Aminogruppe der Aminosäure frei.
-Kopplung: Die Bildung neuer Peptidbindungen zwischen aktivierten Aminosäureestern und freien Aminogruppen auf dem Träger.
Schritt 3
Schutzsockel entfernen:
Nachdem die Synthese der Polypeptidkette abgeschlossen ist, entfernen Sie die Fmoc-Schutzgruppe am N--Ende und legen Sie die freie Aminogruppe am Ende frei.
Schritt 4
Polypeptidketten entfernen:
Entfernen Sie die Polypeptidkette vom Träger und entfernen Sie gleichzeitig alle Schutzgruppen der Seitenkette.
Schritt 5
Aminoacylierung:
Lösen Sie das synthetisierte Peptid in einem geeigneten Lösungsmittel, wie z. B. DMF, und geben Sie eine entsprechende Menge Formamid (HONHCOCH3) für die Carbamoylierungsreaktion hinzu. Durch diesen Schritt werden Z--Schutzgruppen an den Seitenketten jedes Argininrests eingeführt.
Schritt 6
Entfernen des Z-Schutzsockels:
Verwenden Sie geeignete Schutzreagenzien wie TFA (Trifluoressigsäure), um die Z--Schutzgruppe vom Argininrest zu entfernen und die freien Radikale an seinen Seitenketten freizulegen.
Schritt 7
Aminomethylierung:
Lösen Sie das Peptid mit entfernter Z-Schutzgruppe in einem geeigneten Lösungsmittel, geben Sie eine entsprechende Menge Methanolamin (MeNH2) hinzu und führen Sie die Aminomethylierungsreaktion durch. Durch diesen Schritt wird eine Methylierung an den Seitenketten jedes Argininrests eingeführt.
Schritt 8
Reinigung von Rohprodukten:
Durch den Einsatz geeigneter chromatographischer Techniken wie der Umkehrphasen-Hochleistungsflüssigkeitschromatographie werden die synthetisierten Peptide aus Rohprodukten gereinigt, um Verunreinigungen und nicht umgesetzte Substanzen zu entfernen.
Schritt 9
Reinigung:
Die weitere Reinigung des Rohprodukts erfolgt mithilfe höherstufiger Chromatographietechniken wie Umkehrphasen-Hochleistungsflüssigkeitschromatographie oder Säulenchromatographie, um das Zielprodukt mit höherer Reinheit zu erhalten.
Schritt 10
Identifikation:
Verwenden Sie Massenspektrometrietechniken (z. B. Massenspektrometrieanalyse) und Chromatographietechniken (z. B. Hochleistungsflüssigkeitschromatographie), um die Struktur und Reinheit gereinigter Peptide zu identifizieren.
Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC ist der „Goldstandard“ für den Proteasenachweis
In den Bereichen Biochemie und molekularbiologische Forschung ist der Nachweis der Proteaseaktivität ein zentraler Schritt bei der Entschlüsselung von Zellsignalen, Krankheitsmechanismen und der Arzneimittelentwicklung. Herkömmliche Nachweismethoden wie kolorimetrische und radioaktiv markierte Methoden können den modernen Forschungsanforderungen aufgrund geringer Empfindlichkeit, komplexer Bedienung oder potenzieller Sicherheitsrisiken nur schwer gerecht werden.Z-Arg-Leu-Arg-Gly-Gly-AMC(abgekürzt als Z-LRGG-AMC) ist als fluoreszierend markiertes Peptidsubstrat aufgrund seiner hohen Empfindlichkeit, Spezifität und Echtzeitüberwachungsfähigkeit zum „Goldstandard“ für den Proteasenachweis geworden.
Wirkmechanismus: Präzise Umwandlung von Fluoreszenzsignalen
Der Aktionsprozess von Z-LRGG-AMC kann in drei Schritte unterteilt werden:
Proteasen wie SARS-CoV papain-ähnliche Protease PLpro binden spezifisch an Substratpeptidsequenzen über die katalytische Triade (Cys His Asp) im aktiven Zentrum. Beispielsweise priorisiert PLpro die Erkennung von Arg-X-Arg-Gly-Sequenzen, wobei X eine hydrophobe Aminosäure (wie Leu) ist.
Protease katalysiert die Hydrolyse von Peptidbindungen zwischen Arg Leu und setzt AMC-Fluoreszenzgruppen frei. Die Kinetik der Schneidreaktion entspricht der Mie-Gleichung und die Fluoreszenzintensität steigt linear mit der Zeit, wobei die Steigung die Enzymaktivität widerspiegelt.
Echtzeitüberwachung der 460-nm-Fluoreszenzemissionsintensität mit einem Fluoreszenzspektrophotometer oder einem Mikroplatten-Lesegerät. Beispielsweise kann in der SARS-CoV-Forschung die PLpro-Aktivität quantitativ analysiert werden, indem das durch die Z-LRGG-AMC-Spaltung erzeugte Fluoreszenzsignal mit einer Empfindlichkeit auf Dana-Molar-Ebene erfasst wird.
Anwendungsszenario: Multidomänenwissenschaftliche Werkzeuge

Forschung zu viraler Protease: ein zentrales Instrument für die Entwicklung von Anti-Coronavirus-Medikamenten
PLpro ist für die Verarbeitung von Viruspolyproteinen und die Immunabwehr des Wirts verantwortlich und ein wichtiges Ziel für antivirale Medikamente. Z-LRGG-AMC hat als PLpro-spezifisches Substrat eine mehr als dreimal höhere Spaltungseffizienz als herkömmliche Substrate wie Z-Gly-Gly Arg AMC. Beim Arzneimittelscreening können potenzielle antivirale Arzneimittel schnell identifiziert werden, indem die Hemmrate von Verbindungen bei der PLpro-Spaltung von Z-LRGG-AMC ermittelt wird.
For example, a study used this substrate to screen candidate molecules with inhibition rate>90 % aus einer Bibliothek von 100.000 Verbindungen, was eine wichtige Unterstützung für die Entwicklung antiviraler Medikamente wie Remdesivir darstellt. Durch den Vergleich der Schneideffizienz verschiedener Virusstämme PLpro auf Z-LRGG-AMC kann die Auswirkung der Virusvariation auf die Proteaseaktivität aufgedeckt werden. Beispielsweise ist die Schnittrate von SARS-CoV-2 PLpro auf Z-LRGG-AMC 1,5-mal schneller als die von SARS-CoV PLpro, was darauf hindeutet, dass es möglicherweise über eine stärkere Fähigkeit zur Immunregulierung des Wirts verfügt.

Forschung zu Ubiquitinase: Sonde für die Regulierung des Proteinabbaus
IPaseT und andere DUBs regulieren den Proteinabbau durch Spaltung der C-terminalen Sequenz von Ubiquitin. Z-LRGG-AMC simuliert die C-terminale Struktur von Ubiquitin mit einem kcat/Km-Wert von 18 M ⁻¹ s ⁻¹ und ist damit ein ideales Substrat für die Untersuchung der DUB-Kinetik. Beispielsweise kann in der Krebsforschung der Zusammenhang zwischen einem Ungleichgewicht der Proteinhomöostase und dem Fortschreiten des Tumors durch den Nachweis der Spaltungsaktivität von DUB auf Z-LRGG-AMC in Tumorzellen bewertet werden.
In Kombination mit der Fluoreszenz-Resonanz-Energietransfer-Technologie (FRET) kann Z-LRGG-AMC für die Echtzeitverfolgung intrazellulärer Ubiquitinierungs-Modifikationsprozesse verwendet werden. In einem neurodegenerativen Krankheitsmodell zeigt beispielsweise die Bestimmung des Grads der Alpha-Synuclein-Ubiquitinierung den Zusammenhang zwischen seiner Aggregation und der Proteasom-Dysfunktion.

Hochdurchsatz-Arzneimittelscreening: Beschleunigung der Entwicklung neuer Arzneimittel
In einer 384-Well-Platte wurde Z-LRGG-AMC mit der Testverbindung gemischt und Enzyminhibitoren wurden schnell durch Fluoreszenzsignaländerungen gescreent. Diese Methode zeichnet sich durch einen hohen Durchsatz (es können Tausende von Verbindungen pro Tag gescreent werden) und niedrige Kosten (Kosten für eine einzige Pore) aus<0.1 USD), and has become a standard process for drug development. By changing the substrate concentration, the Km (Michaelis constant) and Vmax (maximum reaction rate) of the enzyme on Z-LRGG-AMC were determined, providing a theoretical basis for inhibitor design. For example, a study used this substrate to determine a Km value of 12 μ M for PLpro, providing key data for optimizing inhibitor affinity.
Häufig gestellte Fragen
Ist es vollständig in DMSO aufgelöst oder scheint es sich aufzulösen? – Ein Betrug, der für das bloße Auge unsichtbar ist
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Es ist ein „Meister der Tarnung“ in DMSO -, das beim ersten Auflösen klar ist, aber unter der Induktion von Spurenmengen Wasser fällt es langsam nanoskalige Niederschläge aus, die mit bloßem Auge völlig unkenntlich sind. Obwohl in den Löslichkeitsdaten angegeben ist, dass sie in DMSO löslich sind, sind Peptidsubstrate sehr anfällig für Restspuren von Wasser in DMSO. Das wahre Wissen der Kälte ist, dass das am besten geeignete Lösungsmittel nicht DMSO, sondern eine 10 %ige Essigsäurelösung ist. Diese Schlüsselinformationen erscheinen selten auf regulären Produktseiten und sind ein „Trick“, um die Probleme der „schlechten Reproduzierbarkeit der Ergebnisse“ und der „Signaldrift“ zu lösen.
Es hat keine Angst vor Licht, sondern vor körperlichen Schäden beim „Einfrieren“? --Das besondere „Schmerzgefühl“ von AMC-Gruppen
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Wiederholtes Einfrieren und Auftauen kommt einer „körperlichen Folter“ gleich, denn selbst wenn es nicht abgebaut wird, verlieren die aggregierten Moleküle ihre Substrataktivität. Obwohl die AMC-Gruppe selbst lichtbeständig ist, ist das Peptid aufgrund der Eiskristallkompression während wiederholter Gefrier--Tauzyklen sehr anfällig für irreversible Aggregation. Industriestandard-Empfehlung: Die Lösung kann 6 Monate lang bei -80 °C und nur 1 Monat lang bei -20 °C gelagert werden. Nach dem Auftauen muss die verbleibende Mutterlauge sofort verpackt oder entsorgt werden. Das plötzliche Fehlen eines Signals ist wahrscheinlich auf das Phänomen des „falschen Todes“ zurückzuführen, das durch Frost-Tau-Zyklen verursacht wird.
Wer ist der „leibliche Sohn“ von Z-Leu-Arg Gly Gly AMC?
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Z-LRGG-AMC (Tetrapeptid) ist das „universelle Substrat“ für Ubiquitinase, während Z-RLRGG-AMC (Pentapeptid) der „spezialisierte Schlüssel“ für Heteropeptidase T und SARS-Virus PLpro ist.
Obwohl die beiden allgemein als „Ubiquitin-Enzymsubstrate“ bezeichnet werden, unterscheiden sie sich deutlich voneinander:
Z-LRGG-AMC: simuliert den C--Terminus von Ubiquitin und wird hauptsächlich für den universellen Nachweis der UCH-Familie (wie UCH-L3) verwendet.
Z-RLRGG-AMC: Ein zusätzliches Arg wurde hinzugefügt, was es zu einem spezifischen bevorzugten Substrat für Deubiquitinase USP5 und SARS-Coronavirus PLpro macht.
Warum muss dem Reaktionspuffer DTT (Dithiothreitol) zugesetzt werden? --Das „chemische lebensrettende Symbol“ von aktivem Cystein
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Wenn nicht genügend Reduktionsmittel (z. B. DTT) zugesetzt wird, „rostet“ seine Spaltstelle innerhalb weniger Minuten und verwandelt das Substrat in „tote Materie“.
Seine Hydrolyse hängt vom freien Cystein (Cys) im aktiven Zentrum des Enzyms ab. Die Thiolgruppe wird durch Luft leicht oxidiert und bildet Disulfidbindungen (- S-S -), was zur Enzyminaktivierung führt. Das Standardreaktionssystem (z. B. HEPES-Puffer, pH 7,4) muss 1–5 mM DTT enthalten. Diese „ungeschriebene Regel“ wird oft nur in kleinen Anmerkungen oder methodischen Details erwähnt und ist die häufigste Ursache dafür, dass die Enzyme von Anfängern inaktiv sind, egal wie viel sie hinzugefügt werden.
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